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非洲猪瘟是由非洲猪瘟病毒引起的急性、接触性传染病。近几年随着非洲猪瘟病毒本身的不断变化，临床症状也变得较为复杂，使得猪场在非洲猪瘟诊断方面存在很多不确定性，为了更好的了解非洲猪瘟田间复杂性，笔者将相关内容汇总如下：
非瘟的最新流行情况
01 田间毒株的多样性
非洲猪瘟病毒目前发现的基因型至少有24种，在我国，非洲猪瘟于2018年8月3日传入，毒株是以高毒力的Georgia-07型非洲猪瘟Ⅱ型病毒为主。2019年出现单基因缺失、双基因缺失弱毒株。但在2020年，我国部分省区出现了低致死率的非洲猪瘟基因Ⅱ型自然变异流行株[1]，该毒株主要引起猪只的慢性感染，具有很强的水平传播能力。2021年，在河南省和山东省的猪场中分离到基因Ⅰ型非洲猪瘟病毒低毒力毒株，通过全基因组序列分析表明和葡萄牙分离的基因Ⅰ型高度同源[2]，2023年，在我国猪群中检测到基因Ⅰ型和基因Ⅱ型重组株的高致死性非洲猪瘟病毒[3]。由此可见，非洲猪瘟毒株在不断的发生变化，当前我国非洲猪瘟病毒呈现多毒株流行的状态。
02 田间临床特征的多样性
非洲猪瘟病毒不断变异重组，导致了非洲猪瘟毒株临床特征多样性，详见下表：
03 传播途径认知的提升
在传播途径方面，非洲猪瘟主要通过接触传播，并且早期研究资料显示非洲猪瘟病毒通过气溶胶传播的距离较短，主要局限在近距离（2~3米）。但在2023年最新研究通过模型实验证实，ASFV气溶胶的传播距离至少为10米[4]。这给猪场非瘟防控带来了更大的挑战，尤其是对于一点式饲养的猪场。
非瘟的诊断
对于规模化猪场而言，荧光定量PCR检测应用较为广泛，鉴于当前非洲猪瘟田间多样性的变化，猪场在对非洲猪瘟进行临床诊断时，要注意以下几点：
（1）ASFV弱毒感染后，间歇性排毒的特征变得尤为明显，因此对于弱毒感染的猪场，首次采样最好“咽拭子+血液”双来源，同时一个潜伏期内检测两次，并且要保证配对检测。
（2）在非洲猪瘟检测试剂盒选择方面，不要只以阴阳性的临界CT值作为判断试剂盒优良的依据，也要结合“S”曲线的“平台期”稳定性来判定，即试剂盒“有后劲”。
（3）对于非洲猪瘟的临床确诊，猪场最好采用“核酸检测+抗体检测”双保险来综合判定，以排除在非洲猪瘟不同发病时间段对检测结果的影响。
（4）在非洲猪瘟合样检测方面，当猪场在前期排查非瘟过程中发现阳性，且样本病毒含量很高（Ct值20左右）时，在后期紧急全面检测时，可以适当加大合样数量检测（稀释2048倍不影响结果）；当前期样本病毒含量较低（Ct值33左右）时，后期不建议大范围合样检测（不超过20个样品）。
当前弱毒居多，猪场一旦检测到猪只的相关样品呈非瘟阳性，往往意味着非瘟病毒已经在猪场内完成了由“点”向“面”的扩散，为时已晚，所以建议猪场应该把防非检测往“猪场外围”拓展，比如猪场周边的道路，车辙、装猪台等，便于早期发现，及时止损。（作者：袁飞）
